Агар маннито-солевой EP/USP/ISO Conda 500 г
Агар маннито-солевой EP/USP/ISO Conda 500 г
Артикул: Х0382878
Под заказ
Товар доступен по предварительному заказу. Срок поставки - от 60 календарных дней.
2 376.04 грн
0 отзывов
Минимальная сумма заказа – 200 грн (без учета доставки)
Цены не учитывают доставку и могут меняться, окончательную цену просим уточнять
Маннито-солевой агар предназначен для селективного выделения и подсчета патогенных стафилококков.
Формула в г/л:
• Хлорид натрия: 75,0
• Пептоновая смесь (панкреатический гидролизат казеина и пептический перевар животной ткани 1:1): 10,0
• D-маннит: 10,0
• Мясной экстракт: 1,0
• Феноловый красный: 0,025
• Бактериологический агар: 15,0
• Конечная величина pH 7,4±0,2 при 25°C
Приготовление
Развести 111 г среды в 1 литре дистиллированной воды. Тщательно перемешать и нагреть. Часто помешивая, довести до кипения. Кипятить в течение минуты до полного растворения. Стерилизовать 15 минут при 121°C. Охладить до 45–50°C, тщательно перемешать и разлить в чашки Петри. Готовая среда должна быть красного цвета и храниться при 8–15°C.
Использование
Агар маннит-солевой – селективная среда, которая готовится в соответствии с рекомендациями Чапмена для выделения предположительных патогенных стафилококков. Большинство других бактерий ингибируются высокой концентрацией хлорида натрия.
Пептоновая смесь и мясной экстракт являются источниками питательных веществ, необходимых для роста микроорганизмов: азота, витаминов, минеральных солей и аминокислот. Маннит – углеводный источник энергии; феноловый красный – индикатор pH. Хлорид натрия поддерживает осмотический баланс.
В результате утилизации маннита бактериями образуются кислые продукты, которые изменяют цвет среды с розового на желтый. Благодаря высокой концентрации хлорида натрия среду можно инокулировать большим количеством материала.
Европейская Фармакопея рекомендует следующий метод обнаружения Staphylococcus aureus. После инкубации при 30-35C в течение 18-24 часов в Бульоне триптиказеино-соевом (кат. № 1224) произвести посев на чашки с Агаром манит-солевым, инкубировать при 30-35C в течение 18-72 часов для анализа стимуляции роста. В качестве негативного контроля также инокулировать и инкубировать Escherichia coli АТСС:8739. Маннит-ферментирующие патогенные стафилококки будут представлены большими колониями, окруженными желтой зоной. Непатогенные стафилококки имеют вид небольших колоний, окруженных красным либо фиолетовым ореолом. На возможное присутствие S. aureus указывает присутствие желтых/белых колоний, окруженных желтой зоной. Для подтверждения необходимо проведение идентификационного теста.
Добавление 5% Эмульсии яичного желтка (кат. № 5152) позволяет обнаружить липазную активность стафилококков, а также ферментацию маннита. Высокая концентрация соли в среде осветляет эмульсию яичного желтка, и образование липазы обнаруживается посредством образования желтой матовой зоны вокруг колоний стафилококков. Это явление наряду с положительным коагулазным тестом, подтверждает, что исследуемые микроорганизмы являются патогенными стафилококками.
Инокулировать и инкубировать при 35+/-2C и наблюдать через 18-24 часа и еще раз после 48 часов.
Микробиологический тест
Следующие результаты были получены при использовании среды на тестовых культурах после инкубации при температуре 35±2°C и наблюдались через 18–24 часа и через 48 часов.
Формула в г/л:
• Хлорид натрия: 75,0
• Пептоновая смесь (панкреатический гидролизат казеина и пептический перевар животной ткани 1:1): 10,0
• D-маннит: 10,0
• Мясной экстракт: 1,0
• Феноловый красный: 0,025
• Бактериологический агар: 15,0
• Конечная величина pH 7,4±0,2 при 25°C
Приготовление
Развести 111 г среды в 1 литре дистиллированной воды. Тщательно перемешать и нагреть. Часто помешивая, довести до кипения. Кипятить в течение минуты до полного растворения. Стерилизовать 15 минут при 121°C. Охладить до 45–50°C, тщательно перемешать и разлить в чашки Петри. Готовая среда должна быть красного цвета и храниться при 8–15°C.
Использование
Агар маннит-солевой – селективная среда, которая готовится в соответствии с рекомендациями Чапмена для выделения предположительных патогенных стафилококков. Большинство других бактерий ингибируются высокой концентрацией хлорида натрия.
Пептоновая смесь и мясной экстракт являются источниками питательных веществ, необходимых для роста микроорганизмов: азота, витаминов, минеральных солей и аминокислот. Маннит – углеводный источник энергии; феноловый красный – индикатор pH. Хлорид натрия поддерживает осмотический баланс.
В результате утилизации маннита бактериями образуются кислые продукты, которые изменяют цвет среды с розового на желтый. Благодаря высокой концентрации хлорида натрия среду можно инокулировать большим количеством материала.
Европейская Фармакопея рекомендует следующий метод обнаружения Staphylococcus aureus. После инкубации при 30-35C в течение 18-24 часов в Бульоне триптиказеино-соевом (кат. № 1224) произвести посев на чашки с Агаром манит-солевым, инкубировать при 30-35C в течение 18-72 часов для анализа стимуляции роста. В качестве негативного контроля также инокулировать и инкубировать Escherichia coli АТСС:8739. Маннит-ферментирующие патогенные стафилококки будут представлены большими колониями, окруженными желтой зоной. Непатогенные стафилококки имеют вид небольших колоний, окруженных красным либо фиолетовым ореолом. На возможное присутствие S. aureus указывает присутствие желтых/белых колоний, окруженных желтой зоной. Для подтверждения необходимо проведение идентификационного теста.
Добавление 5% Эмульсии яичного желтка (кат. № 5152) позволяет обнаружить липазную активность стафилококков, а также ферментацию маннита. Высокая концентрация соли в среде осветляет эмульсию яичного желтка, и образование липазы обнаруживается посредством образования желтой матовой зоны вокруг колоний стафилококков. Это явление наряду с положительным коагулазным тестом, подтверждает, что исследуемые микроорганизмы являются патогенными стафилококками.
Инокулировать и инкубировать при 35+/-2C и наблюдать через 18-24 часа и еще раз после 48 часов.
Микробиологический тест
Следующие результаты были получены при использовании среды на тестовых культурах после инкубации при температуре 35±2°C и наблюдались через 18–24 часа и через 48 часов.